Contraction de muscles cardiaques intactes isolés

Analyse du couplage excitation-contraction de muscles cardiaques isolées (papillaires ou trabécules). Les muscles sont disséqués à partir de cœurs isolés (souris, rat, lapin, cobaye) et attachés à un moteur à grande vitesse et à un transducteur de force. Un algorithme informatique itératif dynamique permet en outre de mesurer des relations pression-volume simulées. On peut mesurer simultanément le Ca²⁺ intracellulaire par fluorescence (Indo-1) ou le potentiel d’action avec une électrode.

Paramètres mesurés : Force de contraction, relation de longueur force-sarcomère, cinétique de contraction, dynamique du calcium intra-cellulaire, potentiel d’action

Contraction de cellules cardiaques intactes libres : contraction isotonique

Analyse du couplage excitation-contraction de cellules cardiaques (souris, rat, cobaye). Nous disposons de deux systèmes ionoptix pour mesurer simultanément la contraction des cellules cardiaques isolées (raccourcissement des sarcomères) et les mouvements de calcium par imagerie de fluorescence. L’unité dispose d’un système de fluorescence pour sonde ratiométrique mono-excitation / double émission (Indo1) et d’un système de fluorescence pour sonde ratiométrique double-excitation / mono émission (Fura, HyperSwitch light source). Autres sondes fluorescentes possibles.

Paramètres mesurés: valeurs diastoliques et systoliques, amplitude et durée de contraction/transitoire calcique, temps de contraction (vitesse de contraction) et le temps de relaxation (vitesse de relaxation).

Analyse des propriétés des myofilaments :

Dépendance au Ca²⁺ du développement de la force et taux de consommation d’ATP des ponts actine-myosine dans les muscles cardiaques et squelettiques isolés perméabilisés

Les tissus multicellulaires sont préparées à partir de muscles fraîchement isolés ou de spécimens préalablement congelés (muscle squelettique ou cardiaque; souris, rat, cobaye, humain). Les muscles sont attachés à des clips en T en aluminium (l’image montre une trabécule du ventricule gauche humain). Le muscle perméabilisé est exposé à une série de solution avec [Ca²⁺] variable. L’activité ATPase des ponts actine-myosine est mesurée par une réaction enzymatique couplée (comme illustré) où la vitesse d’oxydation du NADH est couplée de manière stœchiométrique à la libération d’ADP des ponts.

Paramètres mesurés: relations Force-[Ca²⁺], relation ATPase-Force, sensibilité au Ca²⁺ de la Force et activité ATPase, tension-cost, cinétiques des ponts.  La figure illustre la baisse de force et le coût de la tension dans le myocarde de cobaye en insuffisance cardiaque (rouge) par rapport à un cœur contrôle (noir).

Analyse des propriétés des myofilaments : contraction de cellules cardiaques perméabilisées

Analyse spécifique des propriétés de la machinerie contractile (myofilaments) sur cellules cardiaques perméabilisées (souris, rat, cobaye, cochon, chien, Homme). Les cellules cardiaques sont isolées soit par digestion enzymatique d’un cœur « frais » soit par une technique de mixage d’un cœur congelé. Les cellules sont ensuite perméabilisées par un détergeant. La cellule est collée à des pointes métalliques dont une est reliée à un capteur de force et l’autre à un moteur pour effectuer des changements rapides de longueur.

Paramètres mesurés: rigidité cellulaire, sensibilité au calcium de la force, tension active maximale, cinétiques de formation des ponts actine-myosine.

Dynamique d’activation / relaxation des myofibrilles isolées de muscle strié

Durant une contraction, l’appareil contractile cardiaques ou squelettique est temporairement activé par une montée rapide puis une chute rapide de Ca²⁺ intracellulaire. L’évolution temporelle de la contraction est déterminée par les propriétés temporelles du signal d’activation de Ca²⁺ et la réponse dynamique temporelle de la machinerie protéique contractile. La technique de la myofibrille unique permet l’évaluation biophysique de cette propriété vitale. Les myofibrilles isolées sont obtenues par homogénéisation du muscle squelettique congelé (exemple du haut: psoas de lapin) ou cardiaque (exemple du bas: ventricule gauche humain). Dimensions typiques : 30 à 100 µm de longueur et 3-7 µm de diamètre. La myofibrille est attachée à des micro-outils en verre qui servent de contrôleur de longueur rapide et de capteur de force. Les myofibrilles sont perfusées via un système capable de modifier la composition de la solution de perfusion en ~ 3 millisecondes. Une manœuvre rapide de libération-étirement pendant l’activation complète permet l’évaluation de la cinétique de cyclage des ponts (Ktr).

Paramètres mesurés: taux d’activation (Kact), taux de récupération de force (Ktr), biphasique linéaire (Krel.Lin et Trel.Lin) et taux de relaxation exponentielle subséquent (Krel.Exp), développement de la force maximale, sensibilité au Ca²⁺. De plus, la réponse dynamique du myofilament à tout changement rapide de substrat (par exemple phosphate) peut être mesurée.